7.1. Методы предварительного анализа
7.1.1. Понятие об аналитическом скрининге в химико-токсикологическом анализе
7.1.2. ТСХ-скрининг в нормально-фазовом варианте
7.1.3. ТСХ-скрининг в варианте «Toxi-Lab АВ»
7.1.4. ТСХ-скрининг в обращенно-фазовом варианте  (ОФТСХ) 
7.1.5. Внутригрупповой ТСХ-скрининг в частных системах растворителей
7.1.6. Газожидкостная хроматография 
7.1.6.1. ГЖХ-скрининг в анализе лекарственных и наркотических веществ в извлечениях из мочи
7.1.6.2. ГЖХ-скрининг в анализе «летучих» ядов
7.1.7. Иммунохимические методы скрининга лекарственных и наркотических веществ
7.1.8. Аналитический скрининг с помощью химических реакций
7.2. Методы подтверждающего анализа 
7.2.1. Метод высокоэффективной жидкостной хроматографии  (ВЭЖХ)
7.2.2. Методы ПК- и УФ-спектроскопии
7.2.3. Хроматомасс-спектрометрия 
7.2.4. Люминесцентный метод анализа
7.2.5. Микрокристаллоскопический метод 
7.2.6. Фармакологические  (физиологические) пробы
7.2.7. Фармакогностический анализ

Обнаружение ядовитых, сильнодействующих и наркотических веществ после их изолирования из биологических объектов является следующим этапом химико­токсикологического исследования.

Несмотря на большое число реакций и методов качественного анализа, используе­мых в аналитической и фармацевтической химии, требуются некоторые особые подходы для их использования в токсикологической химии. Это объясняется особенностями объ­ектов исследования, возможными примесями и требованиями к достоверности резуль­татов.

Химик-токсиколог для обнаружения в объекте какой-либо группы веществ или опре­деленного вещества обязан использовать только те реакции и методы, которые апробиро­ваны на биологических объектах, рекомендованы для целей химико-токсикологического анализа с учетом всех факторов, влияющих на получаемые результаты. Только в этом случае полученные данные могут быть объективными и застрахованными от возможных ошибок, среди которых могут быть ошибки, связанные с получением ложноположитель­ных или ложноотрицательных результатов.

Ложноположительный результат — это заключение о наличии токсических, экзоген­ных веществ при анализе по определенной методике при фактическом их отсутствии. Это свидетельствует об использовании высокочувствительной, недостаточно специфич­ной методики и возможном отсутствии ее апробации на биологических объектах, осо­бенно находящихся в стадии гнилостного разложения.

Если какое-либо вещество или его метаболит присутствуют в объекте в концентрации ниже предела их обнаружения, то возможно получение ложноотрицательных результа­тов. Причиной этого чаще всего выступает фактор времени, т.е. интервал времени между контактом ядовитого вещества с организмом человека или животного и временем взятия и направления объекта на анализ. В этом случае даже правильно выбранная методика с высокой чувствительностью может дать отрицательный результат.

Для обнаружения токсических соединений в биологических объектах в настоящее время применяются различные химические реакции, физические, физико-химические, биологические  (фармакологические) и другие методы. Среди них выделяют методы и ре­акции предварительного анализа и методы и реакции подтверждающего исследования.

Использование предварительного анализа или предварительных химических реакций преследует цель обнаружить или исключить из анализа группу веществ или какое-либо индивидуальное вещество. Таким реакциям или методам придают «судебно-химическое значение при отрицательном результате». Это означает, что если при использовании данного метода или реакции вещество или группа веществ не обнаружены, дальнейший анализ на эти соединения не проводят и в заключении указывают, что данное вещество или группа веществ в исследуемом объекте не найдены.

Предварительные реакции и методы должны быть чувствительными, но необяза­тельно специфичными. Среди них — скрининговые методы  (ТСХ, Г’ЖХ — скрининг, им- мунохимические методы) и реакции, которые оцениваются как имеющие значение при отрицательном результате: групповые реакции осаждения, хромогенные реакции и др. Эти способы и реакции должны быть обязательно подтверждены химическими и физико­химическими методами.

Предварительные реакции и методы, как правило, не позволяют определить инди­видуальные вещества. Это требует проведения дополнительных исследований. В ток­сикологической химии такие исследования называют подтверждающим анализом, под­тверждающими  (частными) реакциями или частным внутригрупповым скринингом. Среди них методы ВЭЖХ, ГЖХ, ТСХ, УФ- и ИК-спектрометрия, спектрофотометрия в УФ области спектра, масс-спектрометрия, хроматомасс-спектрометрия, люминесцент­ный анализ, аналитические реакции разных типов  (кислотно-основные, окислительно- восстановительные, комплексообразования), микрокристаллоскопический метод, фармакогностический анализ, фармакологические пробы, а также процессы осаждения, экс­тракции и др.

Подтверждающие методы по чувствительности обычно выше или равны предвари­тельным методам исследования. Это позволяет снизить возможность получения ложно­отрицательных результатов. По специфичности подтверждающие методы обычно пре­восходят предварительные, что снижает количество ложноположительных результатов.

При проведении химико-токсикологического анализа с использованием химического метода необходимо учитывать следующие обстоятельства.

Любое чужеродное вещество в организме частично или полностью подвергается ме­таболизму, и поэтому его можно не обнаружить известными реакциями.

В процессе изолирования ядовитые вещества извлекаются не полностью и могут быть частично потеряны, поэтому используемые реакции должны отличаться высокой чувствительно стью.

Объекты, присылаемые на анализ, могут находиться в состоянии гнилостного раз­ложения. Продукты разложения  (птомаины) обычно извлекаются из объекта вместе с исследуемым веществом и могут искажать результаты анализа. Поэтому при анализе та­ких объектов использование химических реакций возможно после тщательной очистки извлечений.

При комбинированных отравлениях  (например, этиловым спиртом и его суррогата­ми) применение характерных реакций затруднено присутствием близких по химическим свойствам соединений. В этих случаях предусмотрено строгое соблюдение условий вос­произведения реакций  (окисления, температурного режима и т.д.), чтобы предотвратить обнаружение одних соединений  (более ядовитых) вместо других. Например, при несо­блюдении условий проведения реакции окисления можно переоткрыть метиловый спирт за счет этилового спирта.

Каждая используемая химическая реакция должна быть рекомендована в опреде­ленной модификации применительно к исследуемому объекту. Это особенно важно в тех случаях, когда проводят исследование объекта на «металлические» яды, посколь­ку многие из них являются микроэлементами и могут быть обнаружены в извлечениях. В таблице 5 даны пределы содержания токсикологически важных элементов в печени и почках — объектах, которые рекомендуются для анализа при подозрении на отравление «металлическими» ядами и содержат наибольшее количество микроэлементов.

В связи с варьированием содержания элементов в тканях, для количественного опре­деления металлов в минерализате для каждого катиона предложены не менее двух мето­дов, которые позволяют определять их в широких пределах концентраций.

По схеме дробного метода анализа предусматривается разбавление минерализата до концентраций, когда естественно содержащийся микроэлемент не может быть обна­ружен, а концентрация попавшего в организм элемента останется достаточной для его обнаружения. При проведении реакций к минерализату добавляют определенный объем воды очищенной, а затем вносят соответствующие реактивы. Приведенные в таблице 6 разведения позволяют исключить обнаружение микроэлементов и одновременно снизить кислотность минерализата.

Таблица 5. Пределы содержажания некоторых элементов в тканях организма человека  (по данным А.Н. Крыловой)

Название элемента	Границы естественного содержания, мг на 100 г органа
	Печень	Почки
Ртуть	0-0,01	0-0,04
Свинец	0,13	0,027
Марганец	0,13-0,40	0,06-0,28
Хром	0,001-0,013	0,028-0,029
Серебро	0,005	—
Медь	0,56-1,12	0,26-0,40
Мышьяк	0,01-0,07	0,01-0,08
Кадмий	0,64-6,68	1,32-8,48
Цинк	2,73-6,71	1,76-6,16
Барий	Незначительные количества
Висмут	Следы
Сурьма	Не обнаружена
Таллий	Не обнаружен
Железо	До 200
Кальций	До 100
Натрий	Значительные количества
Калий	Значительные количества
Фосфаты	Значительные количества
Хлориды	Небольшие количества

Таблица 6. Разбавление минерализата при анализе его на «металлические» яды

Название элемента	Объем минерализата, мл	Объем воды очищенной, мл	Граница обнаружения, мг/100 г
Марганец	1,0	1,0	0,04
Хром	6,0	1.0	0,10
Серебро	5,0	—	0,05
Медь	10,0	—	0,40
Кадмий	10,0	—	2,00
Сурьма	1,0	10	0.10
Висмут	10,0	10	0,10
Цинк	0,5	10	5,00
Мышьяк	2,0	20	0,01

При анализе минерализата на «металлические» яды применяется избирательная экс­тракция в виде диэтилдитиокарбаматов с целью выделения меди, висмута, цинка и кад­мия в органическую фазу, свободную от мешающих ионов. Специфичность экстракци­онных методик выделения этих катионов достигнута за счет использования правила ряда диэтилдитиокарбаматов металлов:

Hg²⁺, Аg⁺, Cu²⁺, Ni²⁺, Со²⁺, Bi³⁺, Sb³⁺, Cd²⁺, Pb²⁺, Zn²⁺, Mn²⁺

Согласно этому ряду каждый предыдущий металл вытесняет последующий из его соли с диэтилдитиокарбаминовой кислотой.

Таблица 7. Маскировка некоторых мешающих ионов в химических реакциях на исследуемые металлы

Используемые ионы	Комплексное соединение
Цианиды	[Men+(CNm)](mn) Со2+, Zn2+, Fe3+, Сd2+, Fe2+, Hg2+, Ag+
Фториды	[FeF6]3-
Фосфаты	[Fe(PO4)2]3-
Тиосульфаты	[Men+(S2O3)m]-(2m-n) Ag+, Pb2+, Fe2+, Bi2+, Fe3+, Sb3+, Cd2+, Hg2+
Тиомочевина	[Men+(S=C(NH2)2)m]n+ Bi3+, Fe3+, Sb3+, Cd2+, Hg2+, Ag+ и др.

Селективная экстракция с дитизоном используется для обнаружения ионов свинца, серебра, таллия, цинка, которые при определенном значении pH среды образуют окра­шенные дитизонаты.

Для исключения влияния других ионов на результаты реакций при анализе минерали­зата используют прием маскировки мешающих ионов  (табл. 7). С этой целью используют цианиды, фториды, фосфаты, тиосульфаты, тиомочевину, гидроксиламин, аскорбиновую кислоту, комплексон III  (трилон Б) и др. Мешающие ионы образуют с этими веществами комплексные соединения и не влияют на результаты реакций, проводимых на исследуе­мые элементы.

Абсолютно специфичных реакций очень мало. По правилам проведения химико­токсикологического анализа для заключения об обнаружении в извлечении из объекта ядовитого соединения необходимо провести не менее 3-4 характерных для данного ве­щества реакций. Например, чтобы сделать вывод об обнаружении в дистилляте этилово­го спирта, необходимо, чтобы три реакции дали положительный результат: образование йодоформа, окисление спирта до уксусного альдегида и образование эфира с уксусной кислотой  (этилацетата).

Результаты некоторых химических реакций оцениваются как «реакции Corpus delicti». Это реакции, продукты взаимодействия которых можно представить вместе с заключением об отравлении как неоспоримое доказательство обнаружения в объекте данного вещества. К числу таких реакций относятся: реакция образования берлинской лазури, результат об­наружения мышьяка в аппарате Марша, реакция образования «серебряного зеркала» и др. Полученный синий осадок берлинской лазури запаивают в небольшую пробирку или ам­пулу и представляют судебно-следственным органам для обоснованности заключения об обнаружении в объекте синильной кислоты. Восстановительная трубка аппарата Марша и микрофотографии налета на ней, имеющего характерную форму кристаллов в виде окта­эдров, убедительное доказательство обнаружения мышьяка в исследуемом объекте.

Для увеличения избирательности некоторых реакций и повышения их чувствитель­ности иногда рекомендуется предварительное выделение ядовитого вещества из иссле­дуемого раствора с использованием экстракции и реэкстракции. Например, чтобы отде­лить изоамиловый спирт от других «летучих» ядов и воды, его из дистиллята извлекают диэтиловым эфиром, эфир испаряют и в остатке обнаруживают изоамиловый спирт со­ответствующими реакциями. Фенол выделяют из дистиллята, подщелоченного гидрокар­бонатом натрия, также путем экстракции диэтиловым эфиром, что позволяет повысить избирательность и чувствительность реакций на него.

При химическом анализе на любое чужеродное соединение эксперт должен руковод­ствоваться специально изданными и утвержденными методиками и соответствующими методическими указаниями.

Комплексное использование различных методов предварительного и подтверж­дающего анализов позволяет надежно диагностировать причину отравления или бо­лезненного состояния организма.

Обнаружение ядовитых веществ и их метаболитов в процессе предварительного и подтверждающего химико-токсикологического анализа не дает однозначного отве­та о количестве яда, попавшего в организм, времени его приема, фазах распределения. Результаты количественного определения найденного токсического соединения позволя­ют выбрать способ детоксикации и лечения пострадавшего при остром и хроническом отравлении.

Выбор метода количественного определения ядовитого вещества в извлечении из объекта зависит:
— от предполагаемой концентрации токсического вещества по результатам предвари­тельного и основного  (подтверждающего) исследования;
— от степени «свежести» объекта и наличия в извлечении продуктов разложения бел­ковых молекул;
— от времени, прошедшего от момента попадания яда в организм и до начала ана­лиза;
— от степени «чистоты» извлечения и наличия фона эндогенных соединений;
— от способности токсического вещества и его метаболитов накапливаться в опреде­ленных органах и тканях;
— от последствий отравления. В случае смертельного исхода чувствительность мето­дик должна быть 10^-3 — 10^-7 г/мл. При наркотическом опьянении, затяжном отравле­нии или после проведенных детоксикационных мероприятий — 10^-8 — 10^-13 г/мл.

7.1. Методы предварительного анализа

7.1.1. Понятие об аналитическом скрининге в химико­токсикологическом анализе

Многообразие лекарственных, наркотических, ядовитых веществ, которые могут быть причиной отравлений, требует проведения предварительного отсеивающего исследова­ния. В токсикологической химии такие исследования принято называть аналитическим скринингом. Скрининг  (screening) в переводе с английского означает «просеивание», «отбор», «сортировка».

Аналитический скрининг — это система методических приемов, позволяющих в ходе исследовательских операций исключить  («отсеять») или определить группы веществ  (индивидуальные соединения) на этапе предварительного исследования.

Это позволяет построить дальнейший анализ в нужном направлении. Аналитический скрининг является эффективным при его соответствии определен­ным требованиям:
— специфичность  (чаще групповая);
— высокая чувствительность;
— экспрессность;
— точность и воспроизводимость;
— возможность сочетания с другими методами анализа.

Скрининг используется при анализе многокомпонентных смесей, а в случае ненаправ­ленного анализа — при исследовании извлечения из биологического объекта на неизвест­ное токсическое вещество.

В настоящее время понятие скрининга в токсикологической химии значительно шире.

Скрининг — это поэтапное движение к выявлению индивидуального вещества путем последовательного исключения групп ядовитых веществ, а затем отсеивания веществ в обнаруженной группе до выявления конкретного соединения.

Из современных скрининговых методов в практике химико-токсикологического анализа нашла широкое применение хроматография в тонких слоях сорбента  (ТСХ) в нормально-фазовом и обращенно-фазовом вариантах. Этот метод доступен, прост в вы­полнении, отличается высокой чувствительностью, эффективностью, экспрессностью и достаточной специфичностью  (избирательностью).

ГЖХ-скрининг используется, в основном, при анализе летучих, лекарственных и нар­котических веществ.

Не потерял своего значения аналитический скрининг с использованием различных химических реакций.

Имеются разработки по использованию в качестве скрининговых методов высоко­эффективной жидкостной хроматографии  (ВЭЖХ), абсорбционной спектроскопии, им- мунохимических методов, спектроскопии ядерного магнитного резонанса.

При использовании этих методов необходима тщательная очистка извлечений от эн­догенных соединений, способных исказить результаты анализа и засорить колонки хро­матографов.

7.1.2. ТСХ-скрининг в нормально-фазовом варианте

Метод используется в химико-токсикологическом анализе при исследовании веществ, изолируемых из объекта экстракцией и сорбцией  (лекарственные, наркотические веще­ства, пестициды).

Неподвижной фазой в ТСХ служит тонкий слой сорбента  (0,1-0,5 мм), содержащий не­большое количество воды и нанесенный на пластинку  (из стекла, фольги или полимера).

Сорбентом чаще всего является силикагель или оксид алюминия, которые закрепля­ются на пластинке добавлением связующего компонента — гипса, крахмала и др.

В качестве подвижной фазы  (элюента, системы растворителей) предложены индиви­дуальные растворители или их смеси в определенных соотношениях. При движении элю­ента за счет капиллярных сил вверх по пластинке происходит разделение смеси веществ. Эффективность разделения зависит от сродства вещества к сорбенту и определяется ко­эффициентом распределения его между обеими фазами — подвижной и неподвижной.

Чтобы обнаружить вещество на пластинке, используют различные способы детек­тирования:
— визуальный, если само вещество окрашено;
— облучение пластинки УФ-лучами, при этом вещество может флуоресцировать или давать темные пятна;
— обработка пластинки соответствующими реагентами-проявителями, которые спо­собны образовать с веществом окрашенные соединения.

Для идентификации вещества используют величину Rf — отношение длины пробега ана­лизируемого вещества к длине пробега растворителя  (рис. 8). После хроматографирова­ния измеряют расстояние от центра пятна до стартовой линии  (отрезок АБ) и от линии фронта жидкости до стартовой точки  (отрезок АВ). Отношение отрезков АБ к АВ обо­значают величиной Rf:

Rf = АБ / АВ

Величина Rf характерна для данного соединения на данном сорбенте в данной систе­ме растворителей. Она зависит от качества и активности сорбента, толщины слоя, при­роды растворителей и их соотношения, а поэтому не всегда воспроизводима.

Более надежной оценкой хроматографической подвижности вещества является вели­чина R,. Для ее определения находят величину Rf исследуемого вещества и Rf вещества, принятого за стандарт. Их отношение малочувствительно к влиянию случайных откло­нений в условиях эксперимента:

Rs = Rf вещества / Rf стандарта

Поэтому Rs — более воспроизводимая и относительно постоянная величина.

Общий ТСХ-скрининг в нормально-фазовом варианте был разработан на кафедре токсикологической химии ММА им. И.М.Сеченова для систематического судебно­химического анализа биологических объектов на лекарственные и наркотические ве­щества, включенные по Приказу М3 СССР №1021 в обязательный круг исследования эксперта в случае ненаправленного анализа. Этот метод применим для веществ кислот­ного, нейтрального, слабоосновного и основного характера. ТСХ-скрининг предполага­ет разделение веществ в общих системах растворителей на хроматографические зоны с последующим исследованием каждой зоны, в которой были обнаружены те или иные соединения с использованием частных систем растворителей.

Как мы уже отмечали ранее, лекарственные и наркотические вещества из биоло­гических объектов изолируются путем настаивания с подкисленным спиртом  (методы Стаса-Отто, Саломатина), нейтральным ацетоном  (метод Карташова), подкисленной во­дой  (методы Васильевой, Степанова-Швайковой, Поповой, Крамаренко), подщелоченной водой  (метод Валова). Из полученных извлечений  (вытяжек) вещества кислотного, ней­трального и слабоосновного характера экстрагируются диэтиловым эфиром или хлоро­формом при рН=2-2,5, а вещества основного характера — при рН=8-10. Хлороформные  (эфирные) экстракты упаривают до небольшого объема и исследуют.

Применительно к веществам, включенным в учебную программу по токсикологиче­ской химии, схему ТСХ-скрининга в общих системах растворителей можно представить следующим образом  (по Б.Н.Изотову).

ТСХ-скрининг веществ кислотного, нейтрального и слабоосновного характера

Цель: выявить наличие токсикологически важных лекарственных веществ в извлечени­ях и определить их принадлежность к определенной группе соединений.

Условия анализа: сорбент — закрепленный слой силикагеля. Система растворителей: хлороформ ацетон  (9:1). Время насыщения камеры парами системы — 15-20 мин. Длина пробега системы растворителей по пластинке 10 см. На стартовую линию хроматогра­фической пластинки наносят  (см. рис. 9):
— полоса А — растворы стандартов  (например, барбамила, антипирина);
— полоса Б — 1/25 часть эфирного экстракта, полученного из водного извлечения при рН=2;
— полоса В — стандарт  (раствор циклобарбитала);
— полоса Г — 1/10 часть эфирного экстракта, полученного из водного извлечения при рН=2.

Реагенты-проявители для обнаружения веществ на пластинке:

— слой сорбента полос А, Б и В обрабатывают 5% раствором сульфата ртути  (II) и 0,1% раствором дифенилкарбазона в хлороформе. Производные барбитуровой кислоты проявляются в виде фиолетовых пятен. Пластинку нагревают горячим фе­ном  (~50°С). Пятна обесцвечиваются.
— затем эти же полосы на пластинке обрабатывают 10% раствором хлорида железа  (III). При этом проявляются производные пиразола, салициловой и бензойной кислот;
— при последующей обработке этих полос модифицированным реактивом Драгендорфа и 10% раствором серной кислоты обнаруживаются вещества основ­ного характера, такие как кофеин, производные 1,4-бензодиазепина и др. Обработка пластинки раствором серной кислоты повышает чувствительность реактива Драгендорфа.

Все вещества кислотного, нейтрального и слабоосновного характера делятся на 3 хрома­тографические зоны в зависимости от значения величины Rf в указанной общей системе растворителей.

Зона 1 включает 2 вещества, имеющие значение Rf 0-0,25. В этой зоне обнаружива­ются антипирин  (Rf 0,19) и кофеин  (Rf 0,25).

Зона 2 включает 7 веществ, имеющих значение Rf 0,31-0,41. В этой зоне обнаружива­ются фенобарбитал  (Rf 0,31), барбитал  (Rf 0,32), нитразепам  (Rf 0,35), барбамил  (Rf 0,37), этаминал-натрий  (Rf 0,37), бутобарбитал  (Rf 0,41), циклобарбитал  (Rf 0,41).

Зона 3 включает вещества, имеющие значение Rf 0,41-0,64. В этой зоне обнаружива­ется диазепам  (Rf 0,62).

Полоса Г на пластинке используется для соскабливания сорбента  (заштрихован­ная часть), элюирования веществ подходящим растворителем  (1 зона — метанолом; 2 и 3 зоны — ацетоном) и последующего хроматографического исследования в частных системах растворителей, в которых все вещества обнаруженной группы соединений хо­рошо разделяются между собой.

ТСХ-скрининг в анализе веществ основного характера

Цель: выявить наличие в извлечении из объекта веществ, являющихся соединениями основного характера.

Условия анализа: сорбент — закрепленный слой силикагеля. Система растворителей: хлороформ — диоксан — ацетон — 25% раствор аммиака  (45:47,5:5:2,5), время насыщения камеры парами системы — 15 мин. Пробег растворителя по пластинке — 10 см.

На стартовую линию хроматографической пластинки наносят  (рис. 10):

— полоса А — растворы стандартов  (например, атропина и новокаина);

— полоса Б — 1/25 часть хлороформного экстракта, полученного из водного извлече­ния при рН=8-10;
— полоса В — раствор стандарта этаперазина;
— полоса Г — 1/10 часть хлороформного экстракта, полученного из водного извлече­ния при рН=8-10.

Реагенты-проявители: слой сорбента полос А, Б, В  (при закрытой полосе Г) последо­вательно обрабатывают:

— 10% раствором хлорида железа  (III). Возможно обнаружение производных фено­тиазина и пиразола;

— 5% раствором нитрита натрия, содержащим 3% хлорной кислоты. Обнаруживают ярко выраженные окрашенные пятна производных фенотиазина;

— 10% раствором серной кислоты и просматривают в УФ-лучах. Возможно обнару­жение хинина по голубой флуоресценции;

— модифицированным реактивом Драгендорфа. Вещества основного характера про­являются в виде оранжевых пятен на бледно-желтом фоне.

Соединения основного характера делятся на пластинке на 4 хроматографические зоны, в зависимости от значения Rf.

Зона 1 включает 8 веществ со значением Rf 0,12-0,36. В этой зоне обнаруживаются пахикарпин  (Rf 0,12), морфин  (Rf 0,14), атропин  (Rf 0,15), эфедрин  (Rf 0,18), хинин  (Rf 0,25), стрихнин  (R 0,25), кодеин  (Rf 0,28), этилморфин  (Rf 0,31).

Зона 2 включает 3 вещества со значением Rf 0,5-0,58. В этой зоне обнаруживаются этаперазин  (Rf 0,51), антипирин  (Rf 0,54), кофеин  (Rf 0,56).

Зона 3 включает 7 веществ со значением R, 0,63-0,83. В этой зоне обнаруживаются хлордиазепоксид  (Rf 0,63), дипразин  (Rf 0,66), новокаин  (Rf 0,7), тиоридазин  (Rf 0,72), аминазин  (Rf 0,75), промедол  (Rf0,76), нитразепам  (R, 0,77).

Зона 4 включает 4 вещества со значением Rf 0,87-0,98. В этой зоне обнаруживаются левомепромазин  (Rf 0,87), папаверин  (Rf 0,91), диазепам  (Rf 0,95), кокаин  (Rf 0,98).

Полосу Г  (заштрихованная часть) соскабливают, элюируют соответствующим раство­рителем, для хроматографической зоны 1 применяют метанол — диэтиламин  (9:1), для 2, 3,4 хроматографических зон метанол — 25% раствор аммиака  (9:1). Затем проводят ис­следование полученных элюатов в частных системах растворителей, в которых вещества данной зоны хорошо разделяются.

Если ни в одной из зон ни с одним из реактивов пятна на пластинках не обна­ружены, делают заключение о ненахождении в объекте исследуемых веществ. При обнаружении пятна в какой-либо из зон проводят основное исследование с использо­ванием подтверждающих реакций и методов.

При экспресс-анализе острых отравлений наркотическими и психотропными веще­ствами ТСХ-скрининг проводят на двух пластинках в двух системах растворителей:
1. толуол — ацетон — этанол — 25% раствор аммиака в соотношении компонентов 45:45:7,5:2,5;
2. диоксан — хлороформ — ацетон — 25% раствор аммиака в соотношении компонен­тов 47,5:45:5:2,5.

На обе пластинки «Силуфол УФ-254» наносят аликвоты извлечений из объекта и стандартные растворы морфина, кокаина, кодеина, аминазина, димедрола, амитрип- тилина и помещают в указанные системы растворителей. Когда системы растворителей достигают высоты 10 см, пластинки вынимают и, после высушивания, просматривают в УФ-свете. Отмечают пятна стандартных веществ и на том же уровне пятна, получен­ные из вытяжки  (извлечения из объекта). Дополнительно на эти зоны наносят капельно реактивы на предполагаемые вещества.

Например:
— смесь серной кислоты и этанола  (1:9) для производных фенотиазина;
— реактив Марки для опиатов;
— концентрированную серную кислоту для димедрола и т.д.

Хроматографирование в двух системах растворителей разной полярности позволяет до­статочно надежно провести групповое, а в ряде случаев индивидуальное обнаружение наркотических и психотропных веществ.

ТСХ-скрининг токсических веществ кислотного и основного характера по методу В.А.Карташова

Исследование проводят на специально приготовленных хроматографических пластин­ках по следующей методике. К 3 г силикагеля марки КСК добавляют 0,2 г гипса и 7,5 мл воды для веществ кислотного характера или 0,025 М раствора гидроксида калия для ве­ществ основного характера. Смесь перемешивают в ступке до однородной массы, нано­сят на обезжиренную стеклянную пластинку размером 9х 12 см, подсушивают и активи­руют при 120°С 30 мин.

Вещества кислотного характера

Сухой остаток, полученный при изолировании по методу В.А.Карташова и содержащий вещества кислотного характера, растворяют в небольшом объеме хлороформа и количе­ственно наносят на стартовую линию хроматографической пластинки  (рис. 11). По кра­ям стартовой линии наносят хлороформные растворы «стандартов»  (дифенин и тиопентал).

Условия анализа. Система растворителей: ацетон — н-гексан — диэтиламин  (10:10:1). После высушивания пластинку обрабатывают раствором сульфата ртути. Вещества кис­лотного характера проявляются в виде полосы, а «стандарты» — в виде пятен белого цвета.

Таблица 8. Хроматографические группы веществ кислотного характера

1 группа	2 группа	3 группа
Ацетилсалициловая кислота	Барбамил	Ноксирон
Салициловая кислота	Барбитал	Тиопентал
Бензойная кислота	Этаминал-нагрий	Мепробамат
Фенобарбитал	Дифенин

Таблица 9. Распределение веществ по хроматографическим группам

1 группа 22 вещества	2 группа 16 веществ	3 группа 7 веществ	4 группа 18 веществ	5 группа 12 веществ	6 группа 5 веществ
Анабазин Морфин Атропин Пахикарпин Бруцин Стрихнин Кониин Хинин и др.	Аминазин Новокаинамид Промедол Димедрол Тиоридазин Дипразин Кодеин Этилморфин и др.	Дикаин Скополамин и др.	Феназон Новокаин Тизерцин Кокаин Элениум и др.	Папаверин Феназепам Мезапам Нитразепам Оксазепам и др.	Эфедрин Седуксен Резерпин и др.

По полученным данным вещество относят к одной из трех хроматографических групп  (табл. 8).

Зону силикагеля, содержащую исследуемое вещество, соскабливают, элюируют хло­роформом, который далее исследуют с помощью частных реакций и физико-химических методов.

Вещества основного характера

К экстракту из щелочного раствора, полученного при изолировании по методу В.А.Карташова, добавляют 2 капли 10% спиртового раствора хлороводородной кислоты и выпаривают при 40°С досуха. Остаток растворяют в небольшом объеме хлороформа, насыщенного аммиаком, и наносят в виде полосы на стартовую линию хроматографи­ческой пластинки  (рис. 12). Справа и слева в две точки на линию старта наносят смесь из 5 «стандартов»: кодеина, дикаина, новокаина, амидопирина и седуксена.

Условия анализа. Подвижная фаза — ацетон. После высушивания пластинку рас­сматривают в УФ-лучах  (светофильтры 254 и 360 нм), отмечают флуоресцирующие зоны, затем обрабатывают реактивом Драгендорфа. «Стандарты» образуют на пластинке пятна оранжевого цвета, и пластинка делится на 6 зон. Исследуемое вещество, проявляющееся; на пластинке в виде окрашенной полосы, попадает в одну из шести хроматографических групп  (см. табл. 9).

Если ни в одной из зон не обнаруживаются полосы оранжевого цвета, делают за­ключение, что в исследуемом объекте вещества основного характера отсутствуют. Если обнаружено пятно, окрашенную зону снимают с пластинки, добавляют гидроксид натрия и экстрагируют диэтиловым эфиром. Эфир испаряют и проводят основное исследование на вещества, относящиеся к определенной группе, используя частные химические реак­ции и различные физико-химические методы.

7.1.3. ТСХ-скрининг в варианте «Toxi-Lab АВ»

В этом варианте модифицирован классический метод тонкослойной хроматографии. Это специально разработанная аналитическая система, которая предназначена для исследо­вания одной пробы объекта  (мочи) на наличие наркотических средств, психотропных и сильнодействующих веществ. Эта система обеспечивает стадию пробоподготовки, экс­тракцию, концентрирование, разделение веществ и их обнаружение.

Эта система представлена тремя наборами экстракционных пробирок с органиче­ским растворителем определенного состава, набором ТСХ-пластин, концентрационных дисков и сосудами для обнаружения веществ:
— «Toxi-Lab А» используется для обнаружения веществ основного, нейтрального ха­рактера  (опиаты, метадон, амфетамины и др.);
— «Toxi-Lab В» используется для обнаружения веществ кислотного и нейтрального характера  (барбитураты, органические кислоты и др.);
— «Toxi-Lab Cannabinoid» используется для обнаружения тетрагидроканнабинола и его производных.

Методика использования системы включает несколько стадий:
— экстрагирование из мочи в специальных экстракционных пробирках экстрагентом определенного состава при рН=4,5 веществ кислотного и нейтрального характера  (барбитураты и др.), при рН=9 веществ основного и нейтрального характера  (опиа­ты, амфетамины, метадон и др.);
— концентрирование полученных экстрактов на сорбирующем материале, представ­ленном в системе в виде микродисков  (диаметром 2,5 мм) под струей теплого воз­духа.
— хроматографирование с использованием специальных пластин, имеющих углубле­ния на линии старта, в которые вставляются диски с сорбированными веществами  (рис. 13). Пластины изготовлены из микроволоконной стеклобумаги, пропитанной кремниевой кислотой и раствором соли ванадия  («Toxi-Lab А») и без раствора соли ванадия.  («Toxi-Lab В»). Системы растворителей для «Toxi-Lab А»: этилаце- тат — метанол — вода очищенная  (29:10:5), для «Toxi-Lab В»: этилацетат — дихлорметан  (40:60). К обеим системам добавляют 25% раствор аммиака в отношении 1:4 или 1:5  (зависит от условий лаборатории).
— обнаружение веществ на пластинах проводится путем последовательного погруже­ния их в сосуды, заполненные специальными хромогеннымисосгавами  (реактив Марки-Манделина, модифицированный реактив Драгендорфа и др.); также об­лучение пластинок УФ-светом при 366 или 254 нм.

На рисунке 13 представлены пластины из каталога системы «Toxi-Lab А» для веществ основного и нейтрального характера. Пластины I, II и III детектированы с помощью реак­тивов Марки-Манделина. Сначала пластинки выдерживали в парах 37% формальдегида и затем погружали в концентрированную серную кислоту, содержащую 0,1% ванадата ммония. Пластина III промыта погружением в воду и освещена УФ-лучами при 254 нм, IV пластина обработана модифицированным реактивом Драгендорфа. На пластины в места 1, 2, 3, 4 фирмой-производителем нанесены растворы стандартных соединений лекарственных и наркотических веществ.

Идентификация веществ на пластинах проводится по окрашенным в определенные цвета или флуоресцирующим пятнам путем сравнения с характеристиками стандартных соединений, нанесенных на пластины производителем.

Метод ТСХ в варианте «Toxi-Lab» позволяет не использовать один из факторов пло­хой воспроизводимости результатов ТСХ-анализа — нанесение пробы на пластинку в ее классическом варианте. Многостадийное детектирование исключает возможность непра­вильной интерпретации получаемых результатов. Предел обнаружения веществ состав­ляет 1 мкг/мл  (морфин). В наборе реактивов и оборудования в данной системе предусмо­трено наличие каталога с образцами результатов анализа более чем для 100 различных токсических веществ и их метаболитов.

7.1.4. ТСХ-скрининг в обращенно-фазовом варианте  (ОФТСХ)

Метод разработан сотрудниками кафедры токсикологической химии Пермской госу­дарственной фармацевтической академии. Сорбентом является тонкий слой силикаге­ля «Сорбтон-2» с привитой алкильной фазой С2 и «Плазмохром» с привитой фазой С.. Привитые фазы придают сорбенту гидрофобные свойства. В качестве связующего ком­понента использована соль кремниевой кислоты, за счет которой слой оказался доста­точно прочным и позволил применять для детектирования последовательно несколько реагентов с целью обнаружения различных групп химических соединений. Для веществ кислотного, нейтрального и слабоосновного характера авторами предложена система растворителей этанол — вода  (3:7), для веществ основного характера — этанол — вода — 25% раствор аммиака  (6:5,5:0,5). Для обнаружения токсических веществ на хроматогра­фических пластинках в качестве реактивов рекомендуются:
— для веществ кислотного характера — растворы хлорида железа  (III), растворы суль­фата ртути и дифенилкарбазона  (в хлороформе);
— для веществ нейтрального характера — фурфурол, подкисленный йодплатинат;
— для веществ основного характера — раствор нингидрина, раствор серной кислота в этаноле, реактивы Драгендорфа, Марки, Манделина и др.

Предел обнаружения веществ на пластинках при обращенно-фазовом варианте в 2-3 раза меньше по сравнению с нормально-фазовым вариантом ТСХ. Идентифицируют веще­ства на пластинках по величине Rf или по величине R, при хроматографировании в при­сутствии вещества-«стандарта».

7.1.5. Внутригрупповой ТСХ-скрининг в частных системах растворителей

Любой вариант ТСХ может быть использован для определения индивидуальных веществ в извлечениях из биологического материала. Для этого необходимо использовать усло­вия, разработанные для узкого круга ядовитых веществ. В качестве «стандартов» берут вещества из этой же группы. Как пример приводим определение индивидуального бар­битурата, если на предварительном этапе выявлено наличие барбитуратов в извлечении  (методика описана Б.Н.Изотовым).

На пластинку со слоем силикагеля, как показано на рисунке 14, наносят растворы стандартов: барбитала, фенобарбитала, барбамила, этаминала, бутобарбитала  (по 2 капли 1 % растворов), а рядом — извлечение из объекта или часть элюата, полученного с пла­стинки  (полоса Г на рис. 10).

Для обнаружения места расположения пятен используют специальные реактивы, ко­торыми опрыскивают с помощью пульверизатора пластинку после ее проявления в си­стеме растворителей и высушивания.

Система растворителей  (частная для барбитуратов): хлороформ — н-бутанол — 25% раствор аммиака  (70:40:5). Сорбент — силикагель КСК, забуференный 0,1 М раство­ром борной кислоты.

Для производных барбитуровой кислоты пластинку обрабатывают в начале раство­ром сульфата ртути  (II), а затем раствором дифенилкарбазона в хлороформе.

Барбитураты проявляются в виде сине-фиолетовых или красно-фиолетовых пятен и имеют следующие значения Rf: барбитал — 0,55; фенобарбитал — 0,40; барбамил — 0,90; этаминал — 0,95; бутобарбитал — 0,65.

Пятно стандарта и пятно анализируемого вещества должны иметь одинаковую окраску и одинаковое значение Rf.

Можно привести такие же примеры по определению индивидуальных веществ из других трупп токсикологически важных веществ  (морфинана, хинолина, фенилалки- ламина и др.).

7.1.6. Газожидкостная хроматография

Газожидкостная хроматография является одним из эффективных методов при прове­дении скрининга. Основным условием использования этого метода является летучесть соединений при температуре испарителя. Во многих методиках рекомендуется перево­дить исследуемые вещества в легколетучие соединения путем их дериватизации. В таких случаях метод ГЖХ является универсальным способом для проведения скрининга.

Газожидкостная хроматография — это один из видов распределительной хроматогра­фии. Разделение веществ происходит в специальных колонках, заполненных твердым носителем, представляющим собой пористый материал природного или синтетического происхождения  (пемза, кизельгур, полисорб, целит и др.). Зернистый носитель набивает­ся в колонку — трубку малого диаметра длиной от нескольких сантиметров до нескольких метров. Колонки изготовляют из нержавеющей стали, меди, алюминия, стекла и других материалов. Твердый носитель имеет тонкий слой неподвижной фазы.

Неподвижная жидкая фаза может быть неполярной — апиезоны  (L, М, N, SE-30, OV-1, OV-101). Это углеводороды и полимеры, в основном, диметил- и триметилсилана:

Неподвижная фаза может быть полярной и чаще всего представлена полиэтиленгли- колем с массой 20 ООО — карбовакс-20М, фенилметилсиланом OV-17, цианоэтилсиланом ХЕ-60 и др. Подвижной фазой является инертный газ, чаще всего азот или гелий. Принцип устройства газожидкостного хроматографа приведен на рисунке 15. Исследуемый объ­ект вносят в дозатор  (3) в количестве нескольких микролитров с помощью микрошпри­ца. Вещества переносятся газом-носителем  (7) в колонку  (5). На колонке происходит разделение компонентов смеси. Разделение смеси зависит от величины коэффициентов распределения веществ между подвижной и неподвижной фазами и от эффективности колонки. Эффективность колонки выражается числом теоретических тарелок. Под «те­оретическими тарелками» понимают количество теоретических ступеней, на которых устанавливается равновесие между подвижной и неподвижной фазами. Чем больше та­ких ступеней на единицу длины колонки, тем лучше происходит разделение веществ.

Из колонки разделенные вещества поступают в детектор  (6). Детектор — часть при­бора, которая регистрирует интенсивность определенных свойств бинарных смесей  (ком­понент + газ-носитель). Изменение интенсивности сигнала детектора свидетельствует об изменении состава газовой смеси. Детекторы могут быть настроены на измерение интенсивности различных физико-химических свойств системы  (плотности, теплопро­водности, теплоты сгорания, ионизации и т.д.), которые преобразуются в электрический сигнал детектора, регистрируемый самописцем  (7).

В практике химико-токсикологического анализа используют катарометр — детектор теплопроводности. Катарометром измеряют разность теплопроводностей чистого газа- носителя и смеси газа-носителя с анализируемым веществом. Чувствительность опреде­ления токсических веществ с помощью катарометра находится в пределах 10^-3— 10^-5 г.

Пламенно-ионизационный детектор  (ПИД). Принцип действия основан на измере­нии тока, возникающего при ионизации молекул органических веществ в пламени водо­рода. При горении чистого водорода ионы почти не образуются, поэтому электропровод­ность водородного пламени очень низка. Органические вещества, сгорающие в пламени водорода, образуют ионы или радикалы. Появление заряженных частиц обусловливает электропроводность пламени. Увеличение электропроводности повышает силу ионно­го тока, которая отображается на хроматограмме в виде пика. Чувствительность ПИД — 10^-9 — 10^-12 г. Хроматограмму двух растворенных веществ можно представить следующим образом  (рис. 16).

На кривой разделения каждому пику свойственны следующие параметры. Высота пика  (2) — это расстояние от вершины пика до его основания  (3). Площадь пит  (4) — пло­щадь, заключенная между контуром пика и его основанием. Основание пика  (3) — отрезок нулевой линии  (1) между крайними точками пика.

Качественной характеристикой в газожидкостной хроматографии считаются:
— Время удерживания вещества. Это время от момента введения смеси веществ в до­затор до момента вычерчивания максимума пика самописцем. При постоянных условиях анализа характерно для данного вещества.
— Относительное время удерживания. Это отношение времени удерживания иссле­дуемого вещества к времени удерживания стандарта.
— Объем удерживания. Эту величину получают путем умножения времени удержи­вания на объемную скорость газа-носителя. Это общий объем подвижной фазы, необходимый для удаления данного вещества из колонки.
— Относительный объем удерживания. Его определяют в присутствии стандартного вещества путем деления найденного времени удерживания компонентов на вре­мя удерживания стандартного вещества после вычитания времени удерживания инертного газа-носителя из обоих значений времени удерживания.
— Удельный удерживаемый объем. Это объем удерживания на 1 г неподвижной жид­кой фазы. Эта величина является константой, подобной точке кипения, и более на­дежна для идентификации.
— Индекс удерживания  (I). Индекс удерживания предложен Ковачем в 1958 г. Он основан на логарифмической шкале, в которой нормальные парафины имеют значения индексов удерживания, в 100 раз превышающие число атомов угле­рода в их молекуле. Например, 200, 300, 400 для этана, пропана, н-бутана соот­ветственно. Поэтому величины 1/100 рассматривают как число атомов углерода в н-парафине, который определялся бы с интересующим нас веществом. Индекс удерживания — более воспроизводимая характеристика для вещества, чем относи­тельный объем удерживания. Он пропорционален логарифму удельного объема удерживания.

В основе идентификации веществ с помощью ГЖХ — сравнение индекса удерживания неизвестного вещества с индексом удерживания известного соединения.

7.1.6.1. ГЖХ-скрининг в анализе лекарственных и наркотических веществ в извлечениях из мочи

Исследуемые вещества выделяют из мочи путем экстракции или сорбции. Для ГЖХ- скршшнга достаточно использовать часть извлечения из объекта, которая соответствует по объему 10 мл мочи  (представлено по методикам, описанным С.К.Ереминым).

Условия хроматографического анализа: прибор ЛMХ-80, детектор термоаэро­зольный  (ТАД), термоионный или беспламенный азотно-фосфорный  (NPD), колонка стеклянная, силанизированная, длиной 1 м, внутренний диаметр — 2-3 мм, сорбент — 3% SE-30 на хромосорбе W  (HP) — 80-100 меш., скорость газа-носителя  (азота) для ТАД 45 мл/мин и для NPD — 40 мл/мин  (гелия), эффективность колонки 1200 т.т.  (ТАД) и 1300  (NPD), температура детектора — 300°С, температура испарителя 250°С, темпера­тура испарителя по линейной программе от 130 до 290°С, объем пробы — 2,5 мкл.

Для идентификации хроматографических пиков определяют индекс удерживания  (Ix). С этой целью используют в качестве стандартов смесь н-алканов СnН2n+2 с числом атомов углерода от 10 до 32, которым присвоены значения индексов, равные 100n  (n — число атомов углерода в алкане). Расчет проводят по формуле:

Ix = 100n + (I_n+1 – I_n) · [(lg t_x – lg t_n) / (lg t_n+3 – lg t_n)]

где Ix — индекс удерживания анализируемого вещества, t_x, t_o, t_n+1— исправленное время удерживания неизвестного вещества (t_x) и ближайших к нему реперных н-алканов с числом атомов углерода n (t_n) и n+1(t_n+1), I_n+1 и I_n — индексы удерживания н-алканов.

Вместо исправленного времени удерживания иногда используют в расчетах истин­ные удерживаемые объемы.

При работе с другими детекторами вместо н-алканов используют в качестве стандар­тов смесь азотсодержащих веществ, индексы удерживания которых также предваритель­но определены по н-алканам при тех же условиях  (см. табл. 10). Стандартное отклонение измеренных индексов удерживания находится в пределах 15-20 единиц. При скрининге «поисковое окно» должно находиться в пределах ±50-60 единиц I, если сравнивается I неизвестного соединения с I известных веществ.

Таблица 10. Смесь анализируемых веществ для расчета индексов удерживания

Вещество	Индекс удерживании по н-алканам
Амитриптилин	2193
Барбитал	1490
Кодеин	2382
Метиламфетамин	1220
Новокаин	2022
Папаверин	2848
Промедол	1838
Стрихнин	3110

Индексы удерживания зависят от концентрации исследуемого соединения в рас­творе. Многие лекарственные вещества, которые не относятся к списку наркотических и одурманивающих, имеют индексы удерживания, близкие к анализируемым соединени­ям, и могут влиять на результаты идентификации. Поэтому ГЖХ-скрининг используют для отсева отрицательных проб и предварительного обнаружения веществ различных фармакологических групп. Все пробы, давшие положительный результат, подтвержда­ются другими надежными методами.

7.1.6.2. ГЖХ-скрининг в анализе «летучих» ядов

Методика газожидкостной хроматографии «летучих» ядов основана на исследовании не самой биологической жидкости  (крови, мочи), а газовой фазы, находящейся над ней. Этот способ назван парофазным анализом  (ПФА) или анализом равновесного пара. В его основе — один из законов Д.П.Коновалова, выражающий зависимость состава пара от состава раствора: «повышение относительного содержания компонента в жидкой фазе всегда вызывает увеличение относительного содержания его и в парах». ПФА основан на технике и принципе газовой экстракции. Простейший вариант ПФА: в гер­метично закрывающийся флакон объемом V помещают исследуемый объект объе­мом V1, содержащий определенный «летучий» яд с концентрацией С1. Объем газовой фазы над объектом Vg равен V-V1. Систему выдерживают при постоянной температуре до установления термодинамического равновесия  (равновесного распределения «лету­чего» яда между жидкостью и газом). Газовую фазу вводят в хроматограф. Измеряют абсолютное значение равновесной концентрации яда Cg. Поскольку в процессе установ­ления фазового равновесия некоторая часть «летучего» яда переходит в газовую фазу, его концентрация в конденсируемой фазе будет меньше исходной С1. Количество веще­ства, перешедшего в газовую фазу из раствора, зависит от соотношения объемов фаз R=Vg/V1 и коэффициента распределения K=C1/Cg. Если пренебречь изменением объема жидкости за счет испарения раствора в процессе установления равновесия, концентра­цию вещества в исходном растворе можно вычислить по его содержанию в равновес­ной газовой фазе по уравнению C1=Cg (K+R). Эта формула лежит в основе парофазного анализа.Метод применяют для определения летучих органических веществ в питьевой воде, природных и сточных водах, пищевых продуктах, крови, моче, фармацевтических и кос­метических препаратах, а также в криминалистике, микробиологии, медицинской диа­гностике и др. В настоящее время имеются специальные автоматические анализаторы и приставки к газовым хроматографам, позволяющие проводить парофазный анализ.В анализе летучих соединений Международный совет по систематическому химико-токсикологическому анализу рекомендует следующие условия проведения ГЖХ- скрининга.

Материал колонки: хромосорб W, фр.  (80-100 меш.); покрытие  (неподвижная фаза) — 15% карбовакс 1500, температура: изотермический режим  (60-100°С); тестовая смесь  (1 г/л): метанол, ацетон, этанол, изопропанол, используемые с целью проверки качества колонки, чувствительности детектора и эффективности разделения; детектор: пламенно­ионизационный  (ПИД).

Методика исследования биологических объектов с помощью парофазного анализа при проведении ненаправленного анализа сводится к следующему.

Внутренние органы и ткани. Навеску измельченного объекта массой 5 г помещают в соответствующую емкость объемом 15 мл, добавляют 0,5 мл 0,5% раствора фосфорно­вольфрамовой кислоты. Емкость плотно закрывают резиновой пробкой, обкатывают алю­миниевым колпачком и нагревают на кипящей водяной бане не менее 15 мин.

Кровь, моча. Исследуемый объект объемом 0,5 мл помещают в емкость объемом 15 мл, закрывают резиновой пробкой, обкатывают алюминиевым колпачком и оставляют при комнатной температуре на 5-10 мин. В системе устанавливается термодинамическое равновесие между жидкой и паровой фазами.

Затем в емкостях прокалывают иглой медицинского шприца резиновую пробку, от­бирают 2 мл парогазовой фазы и вводят в испаритель газового хроматографа.

Для обнаружения и определения этанола и других летучих спиртов применяет­ся утвержденный экспрессный этилнитритный метод, который позволяет обнаружить и определить алифатические спирты С,-С5 в виде алкилнитритов  (метод описан в раз­деле 9.1).

Остальные «летучие» яды в связи с плохим разделением определяют, используя две параллельные колонки с селективными неподвижными фазами различной полярности. Селективность метода повышается модификацией твердого носителя слоем металличе­ского серебра.

Условия анализа: прибор ЛXM-80 или «Цвет», детектор ПИД, скорость потока водо­рода 27-30 мл/мин, воздуха — 200-360 мл/мин, газ-носитель — гелий  (24 мл/мин) или азот  (30 мл/мин), колонки металлические  (1.-1 -2 м, с1м=0,3 см), температура колонки — 80- 85°С, испарителя — 100-110°С, твердый носитель — целит С-22  (фракция 60-80 меш.), мо­дифицированный слоем металлического серебра, или хроматон AW DMCS  (0,20-0,25 мм), неподвижные жидкие фазы: 1,2,3-трис (2-цианоэтокси)пропан или карбовакс 15% 20 М  (1-я колонка) и тритон Х-100 или 10% дионилфталат  (2-я колонка).

Методика. В два пенициллиновых флакона емкостью 10 мл вносят по 1 мл 10% рас­твора фосфорно-вольфрамовой кислоты и по 1 мл исследуемой пробы. Содержимое фла­конов перемешивают и вносят в каждый флакон по 2,5 г безводного сульфата натрия. Флаконы закрывают резиновыми пробками и обкатывают алюминиевыми колпачками. Один флакон помещают на 5 мин в кипящую водяную баню, взбалтывая сразу и затем через 3 минуты. Из этого флакона медицинским шприцем отбирают 0,5 мл парогазовой фазы и вводят ее в 1-ю колонку. Через 5 мин второй флакон помещают в водяную баню и 0,5 мл парогазовой фазы вводят во 2-ю колонку.

По полученным пикам на первой колонке рассчитывают индексы удерживания или tотн и сравнивают с табличными данными. Выбирают вещества, у которых индексы удерживания  (tотн) совпадают или отличаются в пределах «поискового окна». Отобранные вещества включают в круг предполагаемых соединений. Остальные вещества исключа­ются из дальнейших исследований, что сужает круг поиска.

На второй колонке происходит разделение отобранных веществ. Порядок их выхода из колонки также изменяется. Далее рассчитывают индексы удерживания  (tотн) и сравни­вают их с индексами удерживания  (tотн) стандартных веществ из числа предполагаемых ядовитых соединений. Анализируя данные, полученные на 2 колонках с неподвижными фазами разной полярности, делают вывод о присутствии тех или иных «летучих» ядм в исследуемом объекте.

Результаты подтверждаются химическим методом. Если при проведении газохрс- матографического скрининга получен отрицательный результат, т.е. на хроматограмма не обнаружено пиков, характеризующих присутствие какого-либо ядовитого вещества делают вывод о ненахождении группы «летучих» ядов в объекте.

7.1.7. Иммунохимические методы скрининга лекарственных и наркотических веществ

Этот раздел представлен с использованием разработок С. К. Еремина.

Иммунохимические методы  (скрининг-тесты), используемые для анализа наркоти­ческих, психотропных и одурманивающих веществ в биологических жидкостях  (крови, моче, слюне) являются высокочувствительными. Они позволяют за минимальное вре­мя из достаточно большого круга исследуемых соединений выявить одно или несколько веществ. Скрининг-тесты не отличаются высокой специфичностью и часто вообще не­специфичны. Особенность этих методов в том, что при их использовании нет необходи­мости проводить изолирование веществ из объекта и применять специальные приемы по их очистке. В основе иммунохимических методов — взаимодействие специфических белковых антител  (антисывороток) с анализируемым веществом, выступающим в роли антигена  (гаптена). Чем больше концентрация в объекте вещества-антигена, тем больше образуется комплекса антиген-антитело. Чтобы детектировать получаемый результат, один из компонентов реакции — гаптен или антитело — метят специальной меткой.

В основу классификации иммунохимических методов положены тип применяемой метки и способ ее детектирования  (табл. 11).

Все методы иммунохимического исследования включают 4 этапа.
1 этап. Нанесение метки на препарат или его аналог.
2 этап. Добавление антисыворотки с антителами и образование комплекса антитело­меченый препарат.
3 этап. Добавление исследуемой крови  (сыворотки) или мочи. Происходит вытесне­ние анализируемым веществом меченого препарата из комплекса и образование нового комплекса: анализируемое вещество-антитело.
4 этап. Измерение радиоактивности, интенсивности флуоресценции, активности фер­мента и т.д.

В токсикологической химии для проведения скрининга применяются иммунофер- ментный анализ, радиоиммунный и поляризационный флуороиммуноанализ.

Используют два вида иммунохимических методов анализа:
— анализ гомогенный, в котором все компоненты находятся в растворе;
— анализ гетерогенный, в котором реагирующие компоненты разделяют путем вклю­чения стадии «отмывки» или центрифугирования.

Гомогенный иммуноферментный анализ  (ИФА)

В гомогенном ИФА в качестве метки используют оксидазы. Среди них чаще всего при­меняют лизоцим, глюкозо-6-фосфатдегидрогеназу, малатдегидрогеназу. Эти ферменты способны окислять хромогенный субстрат  (специальное химическое вещество, напри­мер хлорнафтол) с образованием окрашенного соединения.

Таблица 11. Классификация иммунохимических методов анализа

Название метода	Способ детектирования
Радиоиммунный анализ  (РИА)	Радиоактивность
Иммуноферментный анализ  (ИФА)	Ферментная активность
Поляризационный флуороиммуноанализ  (ПФИА)	Интенсивность флуоресцентной поляризации
Люминесцентный иммуноанализ  (ЛИА)	Интенсивность люминесценции

Если в исследуемой биологической жидкости присутствует наркотическое, психо­тропное или одурманивающее вещество, анализ пройдет по нижеприведенной схеме.

При отсутствии в биологической жидкости подозреваемого вещества окраски рас­твора наблюдаться не будет, так как комплекс фермент-препарат останется связанным с антителом и не проявит окислительных свойств. Гомогенный анализ экспрессный, вре­мя его проведения I 30 мин  (с учетом времени на обработку результатов). Предел обна­ружения исследуемых веществ 10 4-10 6 г/мл.

ИФА используется для предварительного установления факта употребления одур­манивающих средств. Используемые в анализе антитела — это иммуноглобулины, про­дуцируемые лимфоцитами животных  (мелкого и крупного рогатого скота) при введении им инородных веществ.

Иммуноферментный метод анализа  (ИФА) лекарственных и наркотических веществ можно представить следующей схемой:

Полученные антитела будут игнорировать многие соединения, которые не похожи на антигены  (гаптены). Однако если в исследуемой пробе будут содержаться структурно­родственные соединения, антитела их также будут связывать. Связывание структурно­родственных соединений называется перекрестной реакцией или перекрестной "реактив­ностью. Среди них некоторые продукты распада белковых молекул  (тирании, фенил- пропаноламин), метаболиты ядовитых соединений, лекарственные вещества. Наличие перекрестных реакций с другими лекарственными соединениями может стать причиной ложноположительных реакций.

ИФА всегда используется в комбинации с другими подтверждающими способами и реакциями. При отрицательном результате ИФА не требуется проведения до- полнительных исследований и дается заключение о необнаружении предполагаема веществ.

ИФА в экспресс-диагностике объектов на наркотические и одурманивающие вещества

Этот вариант анализа может проводиться в нелабораторных  («полевых») условиях. Используются индикаторные полоски из целлюлозной хроматографической бумаги. Антитела и фермент глюкозооксидазу ковалентно связывают с поверхностью индика­торной полоски. При погружении индикаторной полоски в исследуемый образец со­держащееся в нем наркотическое вещество связывает определенную часть активных центров антител, находящихся на индикаторной полоске. Затем эту полоску переносят в раствор смеси, состоящий из определяемого наркотика, пероксидазы, глюкозы и хро­могенного субстрата. Определяемое наркотическое вещество на индикаторной полоске связывает активные вакантные центры антител. Глюкоза образует пероксид водорода при взаимодействии с иммобилизированной на индикаторной полоске глюкозоокси- дазой. Пероксид водорода окисляет хромогенный субстрат с образованием окрашен­ного и нерастворимого продукта. Концентрация определяемого вещества  (антигена] обратно пропорциональна интенсивности образующейся окраски. Чем ярче окраска, тем меньше количество вещества в анализируемом растворе. Этот вариант ИФА прост в выполнении и используется в отделениях милиции, спецприемниках, наркологических диспансерах и т. д.

Поляризационный флуороиммуноанализ  (ПФИА)

Этот метод используется при анализе уровня лекарственных и наркотических веществ в биологических жидкостях. В качестве меченого препарата применяют молекулу подо­зреваемого вещества с присоединенной к ней группой, придающей меченой молекуле способность флуоресцировать. В качестве метки используют флуоресцеин. Метод осно­ван на сдвиге угла испускаемого луча света флуоресцирующим образцом при облучении его монохроматическим поляризованным светом. Сдвиг угла испускаемого света при этом сильно зависит от структуры лекарственного или наркотического вещества. Это позволяет определять долю меченых молекул, вытесненных немеченым препаратом, со­держащимся в анализируемой пробе  (крови, моче). Проведя калибровку системы, можно найти концентрацию препарата в исследуемой пробе.

Этот метод предложен для работы фирмой Эббот  (торговая марка ТДХ-анализаторов). Эта фирма выпускает наборы необходимых реагентов для анализа основных противосудорожных, антиаритмических, наркотических и других препаратов из групп опиатов, барбитуратов, производных 1,4-бензодиазепина, каннабиноидов, амфетаминов, кокаина, эфедрина и др. Используемая методика выполняется в автоматическом режиме, отлича­ется высокой чувствительностью и относительной специфичностью.

Поляризационно-флуоресцентный иммуноанализ можно представить следующей схемой:

Гетерогенный иммуноанализ

В качестве метки в этом варианте иммунохимического метода используют ферменты пероксидазу, р-галактозидазу, фосфатазу и др. Метод отличается высокой чувствитель­ностью и позволяет определять вещества в концентрации 10^-6  — 10^-8 г/л. Время анализа со­ставляет 2-4 ч. Выпускаются диагностикумы для обнаружения алкалоидов группы опия, производных барбитуровой кислоты, эфедрона, каннабиноидов и др.

Метод заключается в том, что препарат  (антиген) реагирует с избытком фермент — меченых антител. После образования комплекса антиген-антитело избыток антител связывают добавлением специфического твердофазного иммуносорбента и удаляют от­мыванием или центрифугированием. Затем добавляют хромогенный субстрат. Он взаимо­действует с фермент-меткой, связанной с антителом, закрепленным на твердом носителе, и образует соответствующую окраску. Если концентрация определяемого вещества в про­бе будет значительно превышать концентрацию гаптена, меченого ферментом, то после удаления последнего из реакционной смеси  (при отмывании или центрифугировании) хромогенный субстрат не образует окраски  (положительный результат анализа). При воз­никновении окраски результат анализа отрицательный.

Радиоиммунный метод

Этот метод относится к числу гетерогенных методов, так как для анализа степени вы­теснения меченого антигена из комплекса антиген-антитело необходимо отделить этот комплекс от раствора. В данном методе используют препарат  (или его близкую моди­фикацию), меченый радиоактивным изотопом. С этой целью применяют йод-125  (¹²⁵I) и радиоактивный изотоп водорода — тритий  (³Н), иногда селен. К специфическому анти­телу  (А) добавляют препарат, меченый радиоактивной меткой  (R), а затем исследуемый раствор  (мочу, плазму крови), содержащий исследуемое вещество (II), которое вытесня­ет меченый препарат из комплекса.

Определение веществ идет по схеме:

Освободившийся меченый препарат отделяют от раствора и с помощью специальных приборов определяют степень радиоактивности. После определения радиоактивности можно рассчитать концентрацию препарата в растворе. Метод рекомендуется для обна­ружения и определения многих лекарственных и ядовитых веществ в крови и моче  (пси­хотропных, гормональных, сердечно-сосудистых, производных барбитуровой кислоты, производных 1,4-бензодиазепина, антидепрессантов, наркотических анальгетиков мор- финанового ряда, многих наркотических средств и др.). Этим методом возможно опреде­ление веществ в концентрации в 5-15 раз ниже терапевтического уровня. Метод обладаег достаточной специфичностью. Однако она не полная, так как присутствие в биологиче­ской жидкости метаболитов препарата или других лекарств, близких по структуре к ана­лизируемому веществу, может привести к ложноположительным результатам и завысить получаемые данные. Методу придается значение при отрицательном результате. Если анализ дает положительный результат, данные подтверждаются другими методами и реакциями.

7.1.8. Аналитический скрининг с помощью химических реакций

На первой стадии анализа необходимо выбрать реакции, позволяющие установить или исключить наличие отдельных групп химических соединений или индивидуальных веществ. Поэтому этот анализ носит также характер скрининга. На этой стадии химико­токсикологического анализа используют наиболее чувствительные реакции. Как прави­ло, эти реакции неспецифичны для отдельных веществ. При отсутствии аналитического эффекта вся группа или конкретное вещество исключается из анализа.

Примеры:

При исследовании извлечений из объекта на вещества основного характера рекомен­дуется использовать осадительные  (общеалкалоидные) реактивы. В анализе применяют не менее 4—5 реактивов, отличающихся наибольшей чувствительностью по отношению к большинству алкалоидов и органических оснований:
— фосфорно-вольфрамовая кислота — H₃PO₄ · 12WO₃ · 2H₂O;
— фосфорно-молибденовая кислота — Н₃РO₄ ·  12МоO₃ · 2Н₂O;
— реактив Драгендорфа — раствор йодида висмута в растворе йодида калия;
— реактив Бушарда — раствор йода в растворе йодида калия;
— реактив Майера — раствор йодида ртути в растворе йодида калия.

Для проведения реакций определенную часть хлороформного экстракта испаряют, до­бавляют хлороводородную кислоту для переведения токсических веществ в соли и при­бавляют 1-2 капли соответствующего реактива.

Если ни с одним из реактивов ни мути, ни осадка не образуется, делают заключе­ние о необнаружении алкалоидов и веществ основного характера. Если хотя бы с одним из реактивов образуется муть или осадок — проводят дальнейшее исследование с исполь­зованием подтверждающих методов и реакций.

При анализе извлечений из биологических объектов на группу опийных алкалоидов рекомендованы реакции со специальными реактивами. Для предварительной идентифи­кации опийных алкалоидов и промедола чаще всего используют:
— реактив Марки — раствор формальдегида в концентрированной серной кислоте;
— реактив Фреде — раствор молибдата аммония в концентрированной серной кисло­те;
— реактив Эрдмана — смесь концентрированных серной и азотной кислот;
— реактив Манделина — раствор ванадата аммония в концентрированной серной кис­лоте.

Для проведения реакций на фарфоровых чашках испаряют извлечение из объекта  (хлороформный экстракт, полученный из раствора с рН=8-10) и на сухие остатки нано­сят соответствующие реактивы. При отсутствии окрашивания делают заключение о не­обнаружении алкалоидов опия и промедола.

Исследование эфирных экстрактов из объектов на производные барбитуровой кис­лоты проводят, используя реакцию с аммиачным раствором ацетата кобальта. При от­сутствии окрашивания дают заключение о необнаружении в исследуемом объекте бар­битуратов.

При анализе дистиллята на ядовитые алкилгалогениды используют предварительные реакции отщепления органически связанного хлора и образования изонитрила. При по­лучении отрицательного результата обеих реакций дают заключение о необнаружении в исследуемом объекте хлороформа, хлоралгидрата и четыреххлористого углерода.

Анализ дистиллята на присутствие фенола проводят по реакции с бромной водой, и при отсутствии осадка дается заключение о необнаружении в объекте фенола и кре- золов.

Определение этилового спирта проводят по реакции образования йодоформа. При от­сутствии запаха йодоформа и осадка с характерной формой кристаллов дают заключение о необнаружении в объекте этилового спирта

При проведении холинэстеразной пробы в извлечении из объекта на фосфорсодержа­щие ядохимикаты и получении отрицательного результата дают заключение о необнару­жении всей группы фосфорорганических соединений в объекте исследования и т.д.

Скрининговые методы и аналитические реакции предварительного анализа по­зволяют значительно сократить время, затрачиваемое на исследование биологиче­ского объекта на различные группы ядовитых веществ.

7.2. Методы подтверждающего анализа

7.2.1. Метод высокоэффективной жидкостной хроматографии  (ВЭЖХ)

Высокоэффективная жидкостная хроматография является вариантом колоночной хро­матографии. Ее отличие от классической колоночной хроматографии заключается в ис­пользовании сорбентов с размером зерен 10-30 мкм, поверхностно- и объемно-пористых сорбентов с размером зерен 5-10 мкм, нагнетательных насосов и высокочувствительных детекторов. Быстрый массоперенос при высокой эффективности разделения позволяет использовать ВЭЖХ для разделения и определения веществ в молекулярном или ион­ном виде. В ВЭЖХ сорбент в колонке пропитан неподвижной фазой  (НФ). Подвижной фазой  (ПФ) является элюент, который подается в колонку насосом. Элюент движется под давлением 200 и более атмосфер. На рисунке 17 представлен общий вид хроматогра­фа «Милихром-4».

Разделение основано на различной скорости распределения веществ между непод­вижной и подвижной фазами. Подвижная фаза подбирается так, чтобы обеспечить хоро­шее разделение веществ при сравнительно небольшом времени удерживания.

Если состав подвижной фазы в процессе анализа не меняется, этот режим называют изократическим, если соотношение компонентов меняется — градиентным.

В химико-токсикологическом анализе чаще всего используют вариант обращенно- фазовой хроматографии, когда подвижная фаза более полярна, чем неподвижная фаза. Применяются колонки с привитыми фазами. В качестве подвижных фаз рекомендуются смеси вода — метанол, вода — ацетонитрил или буферные растворы, кислоты, основания, В качестве неподвижной фазы чаще всего применяют гидрофобные вещества, привитые на силикагель  (например, «Сепарон-18»).

Колонку в приборе ВЭЖХ изготовляют из стали или стекла диаметром 0,3-0,8 см, дли­ной 6-25 см. Она помещается в термостат, в котором поддерживается определенная тем­пература.

Детектор в ВЭЖХ обычно спектрофотометрический. Он регистрирует оптическую плотность раствора исследуемого вещества при заданной длине волны. Возможно детек­тирование при нескольких длинах волн.

Идентификация веществ в извлечениях из биологических проб проводится следую­щим образом:
— сопоставляют время  (объем) удерживания определяемого вещества и образца срав­нения;
— сравнивают и сопоставляют светопоглощение предполагаемого компонента и об­разца сравнения при двух или нескольких длинах волн и оценивают их спектраль­ные отношения;
— оценивают совпадение значений времени удерживания определяемого компонента и образца сравнения при добавлении его к экстракту из объекта.

Метод ВЭЖХ нашел широкое применение в настоящее время в практике судебно­химического, клинического анализа при определении и обнаружении в биологических объектах токсических веществ кислотного и основного характера.

Метод ВЭЖХ для общего скрининга не применяется. Это связано с тем, что для каж­дой группы веществ необходимы специфические условия разделения. Этот метод являет­ся оптимальным при частном скрининге, когда круг предполагаемых веществ ограничен  (например, при экспертизе наркотического, токсикоманического опьянения).

Исследуемые вещества  (барбитураты, алкалоиды опия и др.) экстрагируют из под­готовленного объекта хлороформом, диэтиловым эфиром или смесью хлороформа и н-бутанола. Органический растворитель испаряют в токе теплого воздуха и раство­ряют в 100 мкл подвижной фазы, а затем анализируют в приборе, используя условия, рекомендуемые для данной группы соединений.

Для разделения опийных алкалоидов  (по методике С. К. Еремина), выделенных из мочи после ее пробоподготовки с помощью кислотного гидролиза, рекомендуются следующие условия:
— жидкостный хроматограф «Милихром-2, -4 или -5»;
— хроматографическая колонка  (64×2 мм), заполненная обращенно-фазовым сорбен­том марки Сепарон-С18, 5 мкм;
— подвижная фаза  (элюент) — смесь 0,01 М водного раствора ацетата аммония  (ЧДА, ГОСТ 3117-78) и ацетонитрила  (для жидкостной хроматографии) 65:35.
— скорость потока элюента — 100 мкл/мин;
— детектирование проводится при длине волны 230 нм  (рис. 18).

7.2.2. Методы ИК- и УФ-спектроскопии

Теоретические основы спектрометрии хорошо изложены в курсе аналитической химии. Эти методы основаны на поглощении электромагнитного излучения определяемым веществом. Область спектра характеризуется определенным участком длин волн электро­магнитного излучения  (см. табл. 12).

Таблица 12. Спектральные области поглощения

Область спектра	Ультрафиолетовая область	Видимая область	Инфракрасная область
			ближняя	средняя	дальняя
Длина волны, нм	185-380 нм	380-750 нм	750 — 2500 нм	2500 — 25 000 нм	—
Волновое число, см-1	—	—	13300 — 4000	4000 — 400	400-10
Тип поглощения	Электронное		Вращательное, колебательное, деформационное		Молекулярное вращение

Для обнаружения ядовитых веществ в токсикологической химии используют спектрометрию в ближней ультрафиолетовой области от 200 до 380 нм, в видимой области; и средней инфракрасной области спектра. Ультрафиолетовая область до 200 нм требует специальных  (вакуумных) устройств. Аппаратура для дальней инфракрасной области в нашей стране используется в научных целях и в широкой практике не применяется.

Инфракрасная спектроскопия

Спектр поглощения в инфракрасной области представляет собой сложную кривую с большим числом максимумов и минимумов. Спектральные характеристики  (положе­ние максимумов полос, их полуширина, интенсивность) индивидуальной молекулы за­висят от масс составляющих ее атомов, геометрического строения, особенностей меж­атомных сил, распределения заряда и др. Поэтому ИК-спектры строго индивидуальны, что особенно ценно для идентификации вещества. В фармацевтическом и химико­токсикологическом анализе используется область электромагнитного спектра, которая охватывает интервал 4000-250 см '. Совокупность всех полос поглощения, образующая ИК-спектр данного соединения, однозначно определяет его индивидуальность, использу­ется для определения подлинности лекарственного  (токсического) вещества и подтверж­дает его нахождение в извлечениях из объектов химико-токсикологического анализа.

При оценке полученных спектров извлечений из объектов важно знать, какие груп­повые частоты связаны с наличием в молекуле исследуемого соединения определенных функциональных групп. Такие частоты называются характеристическими. Различные молекулы, содержащие одну и ту же атомную группировку, будут давать в ИК-спектре полосы поглощения в области одной и той же характеристической частоты. Это являет­ся основой качественного анализа по ИК-спектрам. Например, полосы в области 3000 — 3600 см^-1 могут быть отнесены только О-Н- или N-H-связям, и отсутствие полос в этой области спектра однозначно свидетельствует об отсутствии ОН- и NH-групп в анализи­руемом веществе. Некоторые полосы приведены в таблице 13.

Таблица 13. Полосы поглощения некоторых функциональных групп

Функциональная группа	Частота, см интенсивность
О-Н	3650-3200 (переменная)
N-H	3500-2900  (средняя)
C-H	3300-2700  (сильная)
C-C	~2500  (слабая)
C=N	~2200  (средняя)
C=O	1850-1650  (сильная)
C=C	~1650  (средняя)
С-O	1300-1000  (сильная)

ИК-спектроскопия используется для обнаружения многих органических соедине­ний, имеющих токсикологическое значение. Методика обнаружения веществ кислотного и основного характера сводится к следующему: сухой остаток после испарения органи­ческого растворителя  (экстракта из биологического объекта) растирают с сухим мелкоизмельченным бромидом калия в соотношении 1:200 или 1:300  (зависит от марки прибо­ра). Часть смеси переносят в специальную матрицу и прессуют. Полученный прозрачный диск помещают в прибор ИК-спектрофотометр и проводят измерения.

Параллельно анализируют стандартный образец. Совпадение полос поглощения в обоих спектрах свидетельствует об идентичности веществ  (табл. 14).

Таблица 14. Основные полосы поглощения некоторых токсических веществ

Анализируемое вещество	Основные пики в ИК-области, см 1
Барбамил	1716, 1689,1745
Кофеин	1658, 1695, 745
Феназон	1660, 770, 1486
Морфин	805, 1243, 1448, 945, 1086, 833
Папаверин	1507, 1068, 1273
Атропин	1720, 1035, 1153
Стрихнин	1664, 764, 1392, 1480
Хинин	1235, 1510, 1030, 1619
Эфедрин	699, 754, 760, 994, 1049, 1242, 1400, 1480, 1605
Аминазин	1455, 747, 1240, 1402, 1561
Новокаин	1274, 1690, 1605

Если отсутствует стандартный образец, то пользуются сборниками спектров  (атла­сами), в которых приводятся спектры веществ и точные условия приготовления пробы для анализа. К настоящему времени изучены и сведены в соответствующие таблицы и атласы инфракрасные спектры более 20 ООО различных соединений, что значительно облегчает практическое использование этого метода.

Метод отличается универсальностью, избирательностью и весьма характерен. В ино­странной литературе его часто называют finger print, т.е. отпечатки пальцев, что означает неповторимость инфракрасного спектра каждого соединения.

Надежная идентификация токсических веществ с помощью этого метода может быть проведена только после тщательной очистки извлечений из объекта.

Спектрофотометрия в УФ-области спектра

Спектрофотометрия — метод анализа, основанный на измерении спектров поглощения в оптической области электромагнитного излучения, обусловленного электронными пе­реходами: σ-σ*, η-σ*, π-π*, η-π*  (переходы перечислены в порядке уменьшения энергии, необходимой для их осуществления).

Различные электронные переходы в молекулах веществ требуют неодинаковой энер­гии, а поэтому полосы поглощения располагаются при разных длинах волн.

Наибольшей энергии требует σ-σ* переход. Он связан с возбуждением внутренних электронов и соответствует поглощению в дальней УФ-области  (А

Эти переходы не регистрируются в рабочем диапазоне спектрофотометра.

Переход η-σ* связан с меньшими затратами энергии и характерен для органических соединений, содержащих п-электроны, локализованные на орбиталях атомов О, N, Hal, S. Они имеют полосы поглощения при длине волны более 200 нм.

Полосы, соответствующие переходам η-π* и π-π*, характерны для гетероцикличе­ских соединений с сопряженными связями, проявляются в области ~ 250-300 нм и имеют большую интенсивность. К этой группе можно отнести соединения, содержащие бен­зольное кольцо. Это поглощение характерно для многих лекарственных веществ, которые в молекуле имеют фенильный радикал, не связанный с ауксохромными группами. Такие вещества трудно различить по характеру спектра поглощения. Например:

В растворе 0,1 М серной кислоты для них характерны три максимума светопоглоще- ния: при длинах волн 250-252 нм, 256-258 нм, 262-264 нм.

Некоторые органические соединения содержат хромофорные группы, которые свя­заны с какой-либо ауксохромной группой. При введении в молекулу различных замести­телей или при изменении условий измерения  (pH среды, природы растворителя) проис­ходит сдвиг полосы поглощения. Если полоса поглощения смещается в сторону более длинных волн, говорят о батохромном смещении. Если полоса сдвигается в сторону бо­лее коротких волн — о гипсохромном смещении.

Например:

Использование УФ-спектрофотометрии в химико-токсикологическом анализе ослож­няется присутствием в извлечении примесей эндогенных соединений, что особенно проявляется при анализе трупного материала, подвергшегося гнилостным изменениям. Эндогенные соединения создают так называемое «фоновое поглощение», искажают ха­рактер спектра поглощения исследуемого соединения.

Для устранения влияния фонового поглощения в различных методиках используют индивидуальные способы очистки, как на первом этапе изолирования  (при настаивании объекта с полярным растворителем), так и на втором этапе  (после экстракции токсиче­ских веществ органическим растворителем из водной фазы). Если фоновое поглощение  остается достаточно высоким, то по характеру спектра не всегда удается идентифициро­вать вещество.

На кафедре токсикологической химии Пятигорской государственной фармацевтиче­ской академии разработана методика, позволяющая значительно уменьшить это влияние при определении производных арилоксиалканкарбоновых кислот и некоторых алкалои­дов в биологических объектах.

С этой целью регистрируют спектр поглощения извлечения из объекта в области длин волн 200-380 нм и рассчитывают его вторую производную, что позволяет исклю­чить влияние линейного фона на результаты анализа. На графике производной спекгра поглощения исследуемого объекта удается четко обнаружить минимумы, которые соответствуют максимумам поглощения исследуемого соединения. Установлено, что предложенный способ устранения влияния «фонового поглощения» применим при анализе; объектов, подвергшихся гнилостному разложению.

В качестве примера приведен случай обнаружения гербицида 2-метил-хлорфеноксиуксусной кислоты в гнилостно-разложившихся органах. После извлече­ния яда и очистки вытяжки спектр поглощения не имел характерных полос поглощенш с максимумами при 278 и 289 нм  (см. рис. 19А).

На второй производной спектра минимумы при 278 и 289 нм соответствуют максимумам, характерным для указанного гербицида  (см. рис. 19Б).

7.2.3. Хроматомасс-спектрометрия

Масс-спектроскопия, масс-спектральный анализ — метод анализа веществ путем опреде­ления массы  (чаще отношения массы к заряду m/z) и относительного количества ионов, получаемых при ионизации исследуемых веществ или уже присутствующих в изучае­мой смеси. Совокупность значений m/z и относительных величин токов этих ионов пред ставляет собой график, который называют масс-спектром вещества.

С помощью масс-спектрометрии можно измерить точную молекулярную массу ор­ганического соединения, рассчитать элементный состав, установить химическое и пространственное строение, изотопный состав, провести качественный и количественный, анализ сложной смеси.

При ионизации органической молекулы образуется ион, в котором далее происходят процессы гетеро- и гемолитического разрыва связей с образованием осколочных ионов, которые также подвергаются дальнейшему распаду. Направление распада — важная характеристика каждого класса соединений. Совокупность всех направлений распада составляет характерную для каждого органического соединения схему фрагментации. Если масс-спектр прост, схема фрагментации сводится к одному пути распада. Например, при  распаде иона СН₃ОН⁺ последовательно образуются ионы СН₂=ОH⁺ и Н-С=O⁺. В случае сложных масс-спектров схема фрагментации отвечает многим, часто перекрывающимся: направлениям распада.

Полученный масс-спектр сравнивают со спектром из каталога. Это быстрый, простой способ структурного анализа и идентификации веществ. Он используется для определе­ния загрязнений окружающей среды, контроля продуктов питания, при изучении про­цессов метаболизма, в криминалистике, а также при анализе биологических объектов на неизвестное ядовитое соединение.

В настоящее время используется сочетание хроматографического и масс- спектрометрического методов. Этот метод получил название хроматомасс-спектрометрии. С помощью хроматографии происходит разделение смеси на отдельные компоненты c помощью масс-спектрометрии проводят обнаружение и количественное определение разделенных веществ смеси.

Хроматомасс-спектрометры выпускаются в двух вариантах — в комбинации с газовым или газожидкостным хроматографом  (соответственно ГХ или ГЖХ) для анализа веществ, находящихся в газовой фазе или в комбинации с высокоэффективным жидкостным хро­матографом для анализа труднолетучих, полярных и термолабильных веществ.

Если в лаборатории имеется только комплект ГХ — масс-спектрометр, то при ана­лизе малолетучих  (барбитураты и др.), полярных соединений и их метаболитов  (опиа­ты и др.) для использования метода необходима дериватизация исследуемых веществ, Дериватизация позволяет исключить потери веществ из-за низкой летучести или сильной полярности. При анализе полярных соединений за счет дериватизации вещества пре­вращаются в менее полярные и более летучие.

Для дериватизации используют реакции различных типов, в основном это:
— ацетилирование: R-O-H → R-O-CO-CH₃;
— ацилирование: R-OH → R-O-CO-C₂F₅;
— силилирование: R-OH → R—О—Si(CH₃)₃.

Дериватизацию проводят в герметически закрытых сосудах, снабженных завинчиваю­щимися крышками, или в сосудах с пробками, которые герметично запечатывают с по­мощью алюминиевых колпачков. В этих сосудах экстракт из мочи упаривают или в них переносят сухой остаток с помощью небольшого объема органического растворителя, который также упаривают досуха. К сухому остатку, содержащему исследуемые веще­ства, добавляют реагент, не допуская попадания воды, чтобы исключить гидролиз де­риватов. Реакция проходит обычно в течение 5-60 мин при температуре менее 100°С. После охлаждения сосуды вскрывают и 1-2 мкл реакционной смеси вносят в инжектор хроматографа.

Наиболее устойчивыми являются ацетилированные производные  (реагент: уксусный ангидрид — пиридин, 1:1). Они сохраняют стабильность в реакционной среде при ком­натной температуре 48-72 ч. В результате дериватизации появляется возможность более точного определения площадей пиков, форма которых становится более симметричной, н повышается чувствительность определения.

Хроматомасс-спектрометр представляет собой сложный прибор, включающий ионо­оптическую, высоковакуумную системы, электронную аппаратуру для усиления и изме­рения ионных токов, а также хроматографический узел для разделения смеси. Блок-схема хроматомасс-спектрометра показана на рисунке 20.

Исследуемую пробу вводят в хроматограф, где происходит разделение смеси веществ. Поток разделенных веществ с газом-носителем проходит через специальный сепаратор, который отделяет газ-носитель от вещества. Затем исследуемое соединение попадает в ионизационную камеру масс-спектрометра. В этой камере частицы веществ иони­зируются и поступают в масс-анализатор, где они делятся по массам. Относительные значения сил токов, возникающих за счет ионов с разной массой, измеряются системой регистрации. Масс-спектр смеси веществ представляет собой ряд последовательно рас­положенных пиков веществ. Деление веществ по массам в анализаторе осуществляется под действием магнитного поля  (чаще однородного). При прохождении пучка ионов че­рез магнитное поле ионный пучок фокусируется на щель приемника. В процессе фо­кусировки пучок ионов с массой ш отделяется от ионов с массой т+Аш. Этот процесс происходит в плоскости щели приемника на расстояние, которое определяется величиной дисперсии  (или разделяющей способности) прибора.

Таким образом, разрешающая сила хроматомасс-спектрометра — это мера его способности разделять два иона с определенной разницей их  масс.

Детектор  (регистрирующее устройство) в приборе осуществляет регистрацию элек­трических сигналов в определенной последовательности. В современных приборах цифровая регистрация и обработка информации проводится с помощью ЭВМ. Прибор записывает полный спектр и проводит обработку нескольких десятков, а иногда и сотен масс-спектров с сотней пиков в каждом из них с одновременной расшифровкой самого спектра. Непрерывная запись полного ионного тока в течение всего времени хроматогра­фического разделения представляет собой хроматограмму смеси. В момент появленш; максимумов на хроматограмме масс-спектрометр быстро записывает полный масс-спектр каждого компонента с интервалом в 1-2 с. Масс-спектр является качественной хе рактеристикой разделяемой смеси и позволяет идентифицировать ее компонента  (предел обнаружения веществ 10 ^-12 г/мл).

Идентификация веществ, выделенных из биологического объекта, проводится по времени удерживания и соответствующему каждому пику на хроматограмме масс-спектр с определенной величиной отношения массы иона к его заряду. Например, в процессе анализа гашиша при определении каннабиноидов из масс-спектра были выделены характерные отношения масса/заряд 231, 314 и 299. В результате обнаружены 2 вещества, имеющие время удерживания 7,55 и 8,31 мин. Эти вещества были идентифицированы по атласу известных масс-спектров как каннабидиол и тетрагидроканнабинол соответ 1 ственно  (Еремин С.К.)

Хроматомасс-спектрометрия является универсальным методом, позволяющим работать с весьма сложными смесями, содержащими всего 10^-10 — 10^-14 г/мл определяемого компонента, что в миллиарды раз меньше требуемых количеств вещества для обычных1 масс-спектрометров. Это особенно ценно для определения следовых количеств ядовитых веществ в биологических жидкостях, волосах и в трупном материале.

7.2.4. Люминесцентный метод анализа

Этот метод основан на явлении люминесценции. Наибольшее распространение получил анализ, основанный на люминесценции, возбуждаемой УФ-излучением. Для этой цели применяют ртутно-кварцевую лампу типа ПРК и светофильтры УФС-3 и УФС-4, кото­рые почти полностью поглощают видимый свет, но пропускают ультрафиолетовый.

По характеру люминесцентного свечения различают фосфоресценцию — свечение, продолжающееся более или менее длительное время после отключения источника воз­буждения свечения и флуоресценцию — свечение, прекращающееся сразу после удаления источника возбуждения.

Интенсивность флуоресценции зависит от присутствия в растворе посторонних ве­ществ. Некоторые вещества способны гасить ее, и в их присутствии интенсивность флуо­ресценции падает. Например, присутствие ионов хлора значительно ослабляет флуорес­ценцию хинина. Некоторые вещества вызывают усиление флуоресценции, например сер­ная кислота. Способность некоторых ядовитых веществ флуоресцировать используется в химико-токсикологическом анализе с целью их обнаружения. Эта реакция отличается высокой чувствительностью.

Если органическое соединение обладает кислотными или основными свойствами, его люминесценция меняется в зависимости от pH среды. Например, в кислой среде в присутствии серной кислоты хинин имеет голубую флуоресценцию, в щелочной среде  (рН=9) хинин флуоресцирует фиолетовым цветом. Продукты окисления хинина имеют желто-зеленую флуоресценцию.

Флуоресценция используется для обнаружения пахикарпина. Продукты его окис­ления флуоресцируют красно-оранжевым цветом. Для секуринина характерна желто­коричневая флуоресценция.

Способность ядовитых веществ флуоресцировать или поглощать УФ-лучи исполь­зуется при определении в биологических объектах лекарственных и наркотических ве­ществ с помощью хроматографии в тонком слое сорбента. При облучении пластинки УФ- излучателем возможно обнаружение некоторых ядовитых веществ. Флуоресцировать мо­гут и трупные яды, выделяемые из объекта вместе с веществами кислотного и основного характера. Например, при облучении УФ-лучами норгарман дает темно-синюю флуорес­ценцию, триптамин — желто-зеленую. Поэтому использование люминесцентного анализа сочетается с применением других подтверждающих способов и реакций обнаружения.

Люминесцентный метод широко используется также в иммунохимическом анализе для обнаружения и определения многих лекарственных и наркотических веществ.

7.2.5. Микрокристаллоскопический метод

Этот метод основан на образовании характерных кристаллических осадков при действии небольших количеств реактивов на каплю анализируемого раствора на предметном сте­кле. Полученный осадок исследуют под микроскопом с увеличением в 60 и более раз. Определяют форму кристаллов, их цвет, размер. Кристаллы характерной формы обра­зуются при медленной кристаллизации из разбавленных растворов. Если концентрация вещества большая или в растворе присутствуют примеси эндогенных соединений, фор­ма кристаллов может искажаться, и идентификация вещества затрудняется. В химико­токсикологическом анализе рекомендуется использовать поляризационный микроскоп и определять кристаллографические и кристаллооптические характеристики кристаллов  (углы между гранями, показатель преломления, угол погасания, знак удлинения, плео­хроизм и др.) для более надежной идентификации веществ. В ряде случаев для характе­ристики внешней формы кристаллов в химико-токсикологическом анализе употребля­ют термины, которые не приняты в кристаллографии. Например: «сростки кристаллов в виде летящих птиц», «кристаллы, напоминающие дубовые листья», «густые сростки кристаллов», «чечевицеобразные кристаллы» и т.д. Микрокристаллоскопический ана­лиз используют обычно как подтверждающий на завершающем этапе исследования, ког­да исследуемое вещество в объекте уже установлено другими реакциями и методами. По образованию осадков и кристаллов характерной формы подтверждают обнаружение многих токсикологически важных соединений.

Например:

1. Производные барбитуровой кислоты идентифицируют и различают между собой по образованию характерных кристаллов с помощью следующих реакций:

• выделение кислотной формы барбитурата;
• с хлорцинкйодом;
• с меднопиридиновым реактивом  (реакция Цвиккера);
• с железойодидной комплексной солью;
• с меднойодидной комплексной солью;
• с реактивом Г.Ф. Лозовой, содержащим растворы йодида калия, этиловый спирт и серную кислоту и др.;

2. Некоторые алкалоиды и вещества основного характера образуют характерные кристаллические осадки с реактивами:

• Драгендорфа;
• с солью Рейнеке NH₄[Cr (NH₃)₂ (SCN)₄];
• с пикриновой кислотой;
• с реактивом Бушарда;
• с хлоридом ртути  (II);
• ализариновым красным;
• роданидом кобальта и др.;

3. Некоторые «металлические» яды образуют характерной формы кристаллы при проведении подтверждающих реакций:

• перекристаллизации из серной кислоты;
• образования тройной соли гексанитрита калия, свинца и меди;
• с солями цезия и йодида калия;
• с хлоридами золота и рубидия;
• с бруцином и бромидом калия;
• с тетрароданомеркуратом аммония;
• образование оксида мышьяка и др.

7.2.6. Фармакологические  (физиологические) пробы

Такие испытания проводятся на некоторые ядовитые вещества, которые при воздействии на организм животных вызывают характерные физиологические реакции. Если в ходе химико-токсикологического анализа в исследуемых объектах обнаружены такие алкало­иды, как атропин, кокаин, вератрин, никотин, стрихнин, то в качестве подтверждающего способа используют фармакологические пробы. С этой целью выделенные из объекта алкалоиды хорошо очищают с помощью соответствующих методов  (о них мы говорили ранее) и испытывают на животных.

Атропин, кокаин при введении в глаз кошки вызывают расширение зрачка  (рис. 21).

При нанесении очищенного экстракта из объекта, содержащего никотин, вератрин, на спинку лягушки она принимает характерную позу  (рис. 22 и 23).

При нанесении на спинку лягушки экстракта из объекта, содержащего стрихнин, по­являются тетанические судороги сначала от прикосновения к лапкам, затем при сотрясе­нии или ударе. Наконец лягушка вытягивается и погибает в характерной позе  (рис. 24).

Фармакологические испытания чаще всего поручаются соответствующему специа­листу — фармакологу. При совпадении результатов фармакологического испытания и химико-токсикологического анализа заключение об обнаружении в объекте атропи­на, кокаина, никотина, вератрина или стрихнина становится более достоверным.

7.2.7. Фармакогностический анализ

В случае обнаружения в содержимом желудка, рвотных массах частей растений, грибов, семян, кусочков индийской конопли проводится фармакогностический анализ. После хи- мического^анализа биологического объекта или параллельно с ним проводится исследо­вание инородных включений растительного происхождения с использованием приемов и методов фармакогностического анализа. В этом случае химик консультируется со спе­циалистом  (фармакогностом) или передает ему изъятые части растений для проведения микроскопического анализа. По характерным признакам  (волоскам, железкам, друзам, пылинкам, особым клеткам и др.) делается заключение о принадлежности изъятых из объекта включений к определенным видам растений  (рис. 25-27).

В сочетании с данными химического анализа делается заключение, явились ли ино­родные включения причиной отравления или нет. Фармакогностический анализ особен­но важен при определении принадлежности частей растений и кустарно изготовленных из них психотропных и сильнодействующих средств к наркосодержащим.